不依赖样本制备的组织学微米级纤维成像
该数据集来自 Dryad,发布于 2025 年,主题为不依赖样本制备的组织学微米级纤维成像。数据涉及计算散射光成像(ComSLI)方法,可在新鲜冷冻和福尔马林固定石蜡包埋(FFPE)组织以及整个人脑切片中映射纤维网络,覆盖动物与人脑切片、不同染色条件

基本信息
资源简介
不依赖样本制备的组织学微米级纤维成像
Micron-resolution fiber mapping in histology independent of sample preparation
该数据集来自 Dryad,发布于 2025 年,主题为不依赖样本制备的组织学微米级纤维成像。数据涉及计算散射光成像(ComSLI)方法,可在新鲜冷冻和福尔马林固定石蜡包埋(FFPE)组织以及整个人脑切片中映射纤维网络,覆盖动物与人脑切片、不同染色条件。数据可用于神经系统疾病尤其是阿尔茨海默病相关的纤维网络研究,支持在组织学图像中解析多方向纤维取向,服务于神经纤维、脱髓鞘疾病及胶原等结构的分析(来源 DOI 解析,Creative Commons Zero v1.0 Universal 许可)。
【数据集背景】
源站首次发布:2025。
【数据内容】
源站描述(机器翻译,仅供参考):绘制大脑的纤维网络对于理解其功能和功能障碍至关重要,但在大视野范围内解析神经轨迹具有挑战性。电子显微镜只能研究小体积脑组织,扩散磁共振成像(dMRI)的空间分辨率有限,而偏振显微镜只能在保持双折射的组织中提供单向取向。散射光成像(SLI)此前已能够对未染色脑冷冻切片中的多方向纤维进行微米级映射。在此,我们表明,使用高灵敏度装置,计算散射光成像(ComSLI)可以在不依赖样本制备的组织学中映射纤维网络,也可用于新鲜冷冻和福尔马林固定石蜡包埋(FFPE)组织,包括整个人脑切片。我们在新的和存档的、动物和人的脑切片中,针对不同染色展示了该方法。
【主题与分类】
主题标签:SLI、ComSLI、Histology、FFPE、Fibers、Nerve fibers、Myelinated nerve fibers、Demyelinating disorders、Bone、Tongue。本站分类:神经系统疾病/阿尔茨海默病。
【获取与许可】
源站页面:https://datadryad.org/dataset/doi:10.5061/dryad.02v6wwqb2
使用许可:Creative Commons Zero v1.0 Universal。
下载信息
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源站:https://doi.org/10.5061/dryad.02v6wwqb2
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pip install openxlab后openxlab.dataset.get(...) - ModelScope:
pip install modelscope后modelscope download - 天池: 登录后页面提供直链下载
以源站「数据下载/使用文档」页面为准。
- OpenDataLab:
数据集大小约 59.40 GB。
数据说明
绘制大脑的纤维网络对于理解其功能和功能障碍至关重要,但在大视场内解析神经轨迹颇具挑战。电子显微镜仅能研究小块脑组织,扩散磁共振成像(dMRI)的空间分辨率有限,而偏振显微镜只能在保持双折射特性的组织中提供单向取向信息。散射光成像(SLI)此前已能在未染色的脑冷冻切片中实现微米级分辨率的多方向纤维成像。在此,我们展示,采用高灵敏度装置的计算散射光成像(ComSLI)能够在不受样本制备方式限制的情况下绘制组织学中的纤维网络,同样适用于新鲜冷冻和福尔马林固定石蜡包埋(FFPE)组织,包括完整的人脑切片。我们在新的和存档的、动物和人的脑切片中展示了该方法,涵盖不同染色和样本制备步骤(石蜡包埋、脱蜡、染色)。通过采用新颖的分析方法,我们将微观取向转换为微观结构信息指导的纤维取向分布(μFODs)。
通过适配MR纤维束成像工具,我们利用取向分布函数和基于微结构的纤维束图追踪轴突轨迹,揭示白质与灰质的连接性。这些方法使我们能够识别多发性硬化症和脑白质病中微结构的改变,揭示海马硬化症和阿尔茨海默病中纤维束的缺陷,并展示其相较于dMRI、偏振显微镜和结构张量分析的关键优势。最后,我们在非脑组织——包括肌肉、骨骼和血管——中绘制纤维图谱,揭示这些组织的功能。我们这种成本效益高、多用途的方法使得跨组织、物种、疾病和样本制备的复杂纤维网络微米分辨率研究成为可能,为神经科学和生物医学研究提供了新的维度。
数据加载示例(图像类)
from PIL import Image
import glob, os
files = (glob.glob(os.path.join(path, "**", "*.png"), recursive=True)
+ glob.glob(os.path.join(path, "**", "*.jpg"), recursive=True)
+ glob.glob(os.path.join(path, "**", "*.tif"), recursive=True))
print("图像文件数:", len(files))
img = Image.open(files[0]); print("尺寸/模式:", img.size, img.mode)
# torchvision Dataset 方式:
# from torchvision import datasets
# ds = datasets.ImageFolder(path) # 要求 子目录=类别
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