FD-seq:固定单细胞的微滴式RNA测序

源站描述介绍FD-seq是一种对PFA固定、染色和FACS分选单细胞进行高通量RNA测序的方法,并用于病毒学两个问题:分析支持疱疹病毒再激活的稀有细胞群,鉴定TMEM119介导KSHV再激活;研究冠状病毒OC43感染细胞的先天免疫激活

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基因组预测GPL216979606
GSE156988: FD-seq: Droplet-based RNA sequencing of fixed single cells

基本信息

模态
基因组
任务类型
预测
创建/更新时间
2026-10-31

资源简介

FD-seq:固定单细胞的微滴式RNA测序

FD-seq: Droplet-based RNA sequencing of fixed single cells

该数据集来自NCBI GEO,标题为FD-seq:固定单细胞的微滴式RNA测序,包含1个文件(GSE156988_series_matrix.txt.gz),属于肿瘤/其他分类。源站描述介绍FD-seq是一种对PFA固定、染色和FACS分选单细胞进行高通量RNA测序的方法,并用于病毒学两个问题:分析支持疱疹病毒再激活的稀有细胞群,鉴定TMEM119介导KSHV再激活;研究冠状病毒OC43感染细胞的先天免疫激活。数据可用于单细胞转录组分析及病毒-宿主相互作用研究(来源 NCBI)。

【数据集背景】

源站首次发布:Aug 27 202。

【数据内容】

源站描述(机器翻译,仅供参考):当前的高通量单细胞RNA测序(scRNA-seq)方法与多聚甲醛(PFA)固定不相容,而PFA固定是一种常见的细胞/组织保存和病毒灭活技术,这阻碍了对需要蛋白质染色和富集的稀有细胞的转录组分析。在此,我们提出FD-seq,一种对PFA固定、染色和FACS分选的单细胞进行高通量RNA测序的方法。我们使用FD-seq来解决病毒学中的两个重要问题。首先,通过分析支持疱疹病毒再激活的稀有细胞群,我们鉴定出TMEM119介导卡波西肉瘤相关疱疹病毒(KSHV)的再激活,KSHV是一种肿瘤病毒。其次,我们研究了感染冠状病毒OC43的细胞中的先天免疫激活,OC43引起普通感冒,也可作为SARS-CoV-2研究的更安全模型病原体。我们发现促炎性细胞因

【数据结构与技术规格】

文件数 1 个,合计 0 B。

【主题与分类】

主题标签:GPL21697、9606。本站分类:肿瘤。

【获取与许可】

源站页面:https://ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi?acc=GSE156988

【使用注意】

· 源站最后修改于 Oct 27 202,引用时请注意版本时效。

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    • OpenDataLab: pip install openxlab 后 openxlab.dataset.get(...)
    • ModelScope: pip install modelscope 后 modelscope download
    • 天池: 登录后页面提供直链下载
      以源站「数据下载/使用文档」页面为准。

数据说明

当前的高通量单细胞RNA测序(scRNA-seq)方法无法与多聚甲醛(PFA)固定技术兼容,而后者是一种常用的细胞/组织保存及病毒灭活技术,这阻碍了对需要蛋白质染色和富集的稀有细胞进行转录组分析。在此,我们提出了FD-seq,一种对PFA固定、染色并经FACS分选的单细胞进行高通量RNA测序的方法。我们利用FD-seq解决了病毒学中的两个重要问题。首先,通过分析支持疱疹病毒再激活的稀有细胞群体,我们鉴定出TMEM119介导卡波西肉瘤相关疱疹病毒(KSHV)——一种肿瘤病毒——的再激活。其次,我们研究了感染冠状病毒OC43的细胞中的先天免疫激活情况,该病毒引起普通感冒,同时也作为研究SARS-CoV-2的更安全的模型病原体。我们发现,促炎细胞因子的诱导——这是SARS-CoV-2感染者严重致病性的主要因素——主要由未感染或低度感染的旁观者细胞驱动,这些细胞暴露于病毒但未能表达高水平的病毒基因。

FD-seq是一种简单的方法,适用于表征感兴趣的稀有细胞群体的转录组,以及研究高防护级别的生物样本,如经PFA灭活后的SARS-CoV-2感染细胞。

数据加载示例(图像类)

from PIL import Image
import glob, os

files = (glob.glob(os.path.join(path, "**", "*.png"), recursive=True)
       + glob.glob(os.path.join(path, "**", "*.jpg"), recursive=True)
       + glob.glob(os.path.join(path, "**", "*.tif"), recursive=True))
print("图像文件数:", len(files))
img = Image.open(files[0]); print("尺寸/模式:", img.size, img.mode)

# torchvision Dataset 方式:
# from torchvision import datasets
# ds = datasets.ImageFolder(path)  # 要求 子目录=类别

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