来自脾和骨髓的静息记忆、静息初始及体外活化记忆CD8+CD127+ T细胞的基因表达

该数据集收录了老年C57BL/6小鼠脾和骨髓来源的静息初始(CD44-CD127+)与静息记忆(CD44+CD127+)CD8+CD3+ T细胞,以及经抗CD3和抗CD28活化42-44小时的记忆T细胞的全局基因表达数据

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基因组回归Transcriptomics
Gene expression of resting memory, resting naive and in vitro activated memory CD8+CD127+ T cells from spleen and bone marrow (BM)

基本信息

模态
基因组
任务类型
回归
创建/更新时间
2026-10-11

资源简介

来自脾和骨髓的静息记忆、静息初始及体外活化记忆CD8+CD127+ T细胞的基因表达

该数据集收录了老年C57BL/6小鼠脾和骨髓来源的静息初始(CD44-CD127+)与静息记忆(CD44+CD127+)CD8+CD3+ T细胞,以及经抗CD3和抗CD28活化42-44小时的记忆T细胞的全局基因表达数据。样本经流式分选后提取总RNA,并用Agilent 2100 Bioanalyzer和NanoDrop ND-1000评估RNA完整性与浓度,再合成双链互补RNA。数据可用于比较静息与活化记忆CD8+ T细胞的转录差异,研究T细胞活化、免疫记忆及衰老相关免疫机制(来源 omicsdi.org)。

【数据内容】

源站描述(机器翻译,仅供参考):为了解静息与活化记忆CD8+ T细胞之间的差异,我们比较了离体分离的初始细胞以及脾和骨髓记忆细胞与体外活化的脾和骨髓记忆细胞的全局基因表达。制备了老年C57BL/6小鼠脾和骨骼的单细胞悬液。随后通过流式细胞术分选初始(CD44-CD127+)和记忆(CD44+CD127+)CD8+CD3+ T细胞。分选后的细胞要么立即处理用于RNA制备,要么用抗CD3和抗CD28活化42-44小时。使用NucleoSpin RNA(Macherey-Nagel)提取总RNA。使用Agilent 2100 Bioanalyzer(Agilent, Waldbronn, Germany)和NanoDrop ND-1000分光光度计(NanoDrop Technologies, Wilmington, DE)评估每个样本分离RNA的完整性和量。使用1 M-BM-5g总RNA合成双链互补RNA,使用Mes

【主题与分类】

主题标签:Transcriptomics。本站分类:肌肉骨骼系统疾病。

【获取与许可】

源站页面:https://omicsdi.org/dataset/biostudies-arrayexpress/E-GEOD-62691

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      以源站「数据下载/使用文档」页面为准。

数据说明

为了解静息状态与活化状态记忆CD8+ T细胞之间的差异,我们比较了离体分离的初始细胞以及脾脏和骨髓记忆细胞与体外活化的脾脏和骨髓记忆细胞的全局基因表达。制备了老年C57BL/6小鼠脾脏和骨骼的单细胞悬液。随后通过流式细胞术分选初始(CD44-CD127+)和记忆(CD44+CD127+)CD8+CD3+ T细胞。分选后的细胞要么立即处理用于RNA制备,要么用抗CD3和抗CD28活化42-44小时。使用NucleoSpin RNA(Macherey-Nagel)提取总RNA。使用Agilent 2100 Bioanalyzer(Agilent,Waldbronn,德国)和NanoDrop ND-1000分光光度计(NanoDrop Technologies,Wilmington,DE)评估每个样本中分离RNA的完整性和数量。使用Message AmpII Biotin(Ambion,美国)从1 μg总RNA合成双链互补RNA。将每个样本15微克片段化的cRNA与MG_U430_2 GeneChips(Affymetrix)以三重复形式杂交。杂交在Hybridization Oven 640中进行,芯片在Fluidics Station 400(均为Affymetrix产品)中洗涤和染色。

最后,使用Affymetrix的GCOS软件1.4版,通过GeneChip Scanner 3000对芯片进行扫描。所有经过质量检查的微阵列相关GCOS数据,均采用高性能芯片数据分析(HPCDA,未发表)方法,在BioRetis数据库(www.bioretis-analysis.de)中进行分析,此过程已按先前描述并验证。

数据加载示例(图像类)

from PIL import Image
import glob, os

files = (glob.glob(os.path.join(path, "**", "*.png"), recursive=True)
       + glob.glob(os.path.join(path, "**", "*.jpg"), recursive=True)
       + glob.glob(os.path.join(path, "**", "*.tif"), recursive=True))
print("图像文件数:", len(files))
img = Image.open(files[0]); print("尺寸/模式:", img.size, img.mode)

# torchvision Dataset 方式:
# from torchvision import datasets
# ds = datasets.ImageFolder(path)  # 要求 子目录=类别

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