COVID-19患者固有淋巴样细胞单细胞多组学分析关键差异表达基因原始数据
该数据集为COVID-19患者固有淋巴样细胞单细胞多组学分析研究的原始数据,来源于Harvard Dataverse,包含四个批次(131a、131b、131c、131d)的单细胞原始与处理后数据

基本信息
资源简介
COVID-19患者固有淋巴样细胞单细胞多组学分析关键差异表达基因原始数据
Raw Data for: Single cell multi-omic analysis identifies key genes differentially expressed in innate lymphoid cells from COVID-19 patients
该数据集为COVID-19患者固有淋巴样细胞单细胞多组学分析研究的原始数据,来源于Harvard Dataverse,包含四个批次(131a、131b、131c、131d)的单细胞原始与处理后数据。由于文件大小限制,大于约1 GB的FASTQ文件被拆分为多个顺序部分,需下载全部分片及MANIFEST.tsv和merge_fastq.sh合并脚本,运行脚本重建原始FASTQ文件并校验完整性。数据可用于研究COVID-19患者固有淋巴样细胞的差异表达基因及单细胞层面的多组学特征(来源 DOI 解析)。
【数据集背景】
源站首次发布:2026。
【数据内容】
源站描述(机器翻译,仅供参考):重要提示:FASTQ文件被拆分为多个部分——使用前请先合并。由于Harvard Dataverse的文件大小限制,每个大于约1 GB的FASTQ文件已被拆分为顺序部分,例如Batch_131a_S2_L001_R1_001.part_001.fastq.gz、Batch_131a_S2_L001_R1_001.part_002.fastq.gz等。使用原始reads前,请将样本的所有部分连同MANIFEST.tsv和merge_fastq.sh下载到同一个文件夹,并运行:bash merge_fastq.sh . --verify。该shell脚本(macOS/Linux)会重建原始FASTQ文件,报告任何缺失的部分,并根据MANIFEST.tsv中的校验和检查每个重建文件。完整说明、原始文件名列表和reads计数见ReadMe.txt和MANIFEST.tsv。请先阅读ReadMe.txt。数据集内容:该数据集包含来自四个批次(131a、131b、131c和131d)的原始和处理后的单细胞数据,gen
【主题与分类】
主题标签:Medicine, Health and Life Sciences。本站分类:感染性疾病。
【获取与许可】
源站页面:https://dataverse.harvard.edu/citation?persistentId=doi:10.7910/DVN/R2PCHU
下载信息
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暂未开放公开下载
无需注册即可直接获取公开样本或文档,适合快速预览和评估数据集质量。
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使用方式
数据集获取
源站:https://doi.org/10.7910/DVN/R2PCHU
标准获取流程:
- 访问源站链接,注册/登录账号;
- 进入数据集详情页,按页面指引申请权限或直接下载;
- 部分平台提供 SDK,例如:
- OpenDataLab:
pip install openxlab后openxlab.dataset.get(...) - ModelScope:
pip install modelscope后modelscope download - 天池: 登录后页面提供直链下载
以源站「数据下载/使用文档」页面为准。
- OpenDataLab:
数据集大小约 135.57 GB。
数据说明
重要:FASTQ文件已分割为多个部分——使用前请先合并
由于Harvard Dataverse的文件大小限制,每个大于约1 GB的FASTQ文件均已被分割为按顺序编号的多个部分,例如Batch_131a_S2_L001_R1_001.part_001.fastq.gz、Batch_131a_S2_L001_R1_001.part_002.fastq.gz等。在使用原始reads之前,请将同一样本的所有部分连同MANIFEST.tsv和merge_fastq.sh下载到同一个文件夹中,并运行:bash merge_fastq.sh . --verify
该shell脚本(macOS/Linux)会重建原始FASTQ文件,报告任何缺失的部分,并根据MANIFEST.tsv中的校验和检查每个重建的文件。完整说明、原始文件名列表和reads计数见ReadMe.txt和MANIFEST.tsv。请先阅读ReadMe.txt。
数据集内容
本数据集包含使用BD Rhapsody单细胞分析系统生成的四个批次(131a、131b、131c和131d)的原始和处理后单细胞数据,使用了靶向mRNA panel并结合29种AbSeq抗体-寡核苷酸进行蛋白检测。原始双端FASTQ文件已按上述方式分割为多个部分。
每个批次的计数表(CSV),共四个版本:Batch_ DBEC_MolsPerCell.csv、Batch DBEC_ReadsPerCell.csv、Batch RSEC_MolsPerCell.csv、Batch _RSEC_ReadsPerCell.csv,以及MANIFEST.tsv、merge_fastq.sh和ReadMe.txt。各批次的细胞数和流程版本如下:131a:3,893个细胞;BD Rhapsody靶向分析流程v1.9-beta。131b:8,743个细胞;BD Rhapsody靶向分析流程v1.9-beta。131c:2,559个细胞;BD Rhapsody靶向分析流程v1.9.1。131d:4,285个细胞;BD Rhapsody靶向分析流程v1.9.1。数据流程:重新组装FASTQ文件:按照ReadMe.txt的说明,使用merge_fastq.sh合并拆分文件(*.part_NNN.fastq.gz)。双端测序读段:R1包含细胞标签和唯一分子标识符(UMI);R2包含cDNA或AbSeq标签序列。BD Rhapsody处理:靶向分析流程识别细胞,将读段分配给基因或AbSe
数据加载示例(图像类)
from PIL import Image
import glob, os
files = (glob.glob(os.path.join(path, "**", "*.png"), recursive=True)
+ glob.glob(os.path.join(path, "**", "*.jpg"), recursive=True)
+ glob.glob(os.path.join(path, "**", "*.tif"), recursive=True))
print("图像文件数:", len(files))
img = Image.open(files[0]); print("尺寸/模式:", img.size, img.mode)
# torchvision Dataset 方式:
# from torchvision import datasets
# ds = datasets.ImageFolder(path) # 要求 子目录=类别
目录组织与标注格式以源站说明和下载后实际文件为准。
需要用于商业化训练或医疗器械注册(NMPA/FDA)?
公开数据往往缺乏完整的病理回证与专家标注。千方医数集依托陕川双基地与超十家三甲医院直连,提供完全合规、去标识化、支持注册级质控的专病数据集交易服务。




